Glossina fuscipes - Glossina fuscipes
Glossina fuscipes | |
---|---|
Klasyfikacja naukowa | |
Królestwo: | Animalia |
Gromada: | Arthropoda |
Klasa: | Insecta |
Zamówienie: | Diptera |
Rodzina: | Glossinidae |
Rodzaj: | Glossina |
Gatunki: |
G. fuscipes
|
Nazwa dwumianowa | |
Glossina fuscipes Newstead, 1910
|
|
Podgatunki | |
|
|
Synonimy | |
|
Glossina fuscipes to gatunek muszki rzecznej z rodzaju Glossina , który jest powszechnie znany jako muchy tse-tse . Zazwyczaj znajdują się w Afryce subsaharyjskiej , G. fuscipes jest regionalnym wektor z śpiączka afrykańska , powszechnie znany jako śpiączki, która powoduje znaczne stawki zachorowalności i śmiertelności wśród ludzi i zwierząt . W związku z tym gatunek ten jest jednym z kilku, na które badacze celują w celu kontroli populacji jako metody kontrolowania choroby.
Opis fizyczny
G. fuscipes są często brązowe lub szaro-brązowe. Ich ciała mają zwykle zróżnicowane ciemne i jasne plamy, skutecznie kamuflując je na powierzchniach takich jak kora, skała lub gleba. W spoczynku G. fuscipes wydają się szczupłe, gdy składają skrzydła na plecach, tak że jedno kładzie się na drugim. Jest to w przeciwieństwie do much i much plujek których skrzydełka wystają na zewnątrz pod kątem podczas odpoczynku na plecach. Po posiłku z krwi brzuch owada będzie wyglądał na duży, zaokrąglony i czerwony.
Samce
Podczas badania samca G. fuscipes od strony brzusznej można zobaczyć zaokrągloną strukturę zwaną podskrzydłem na tylnym końcu brzucha . Bezpośrednio przed podskrzydłem znajduje się płyta z ciemnymi włosami zwanymi hektorami. Zarówno hipopygium, jak i hektory pomagają odróżnić samca od samicy i służą do chwytania końca brzucha samicy podczas krycia . Jak rozpoczyna kopulacji hypopygium rozwija odkryć lepszych i gorszych claspers jak również fallus .
Kobiety
Na końcu kobiecego brzucha brakuje jakichkolwiek znaczących struktur, które byłyby odpowiednikiem męskiego podskrzydła i hektorów; jednak samice mają srom , na którym może znajdować się kilka małych płytek, które pomagają w identyfikacji gatunku.
Koło życia
Etap jajeczny
W ciągu kilku godzin plemniki przemieszczają się ze spermatoforu do spermateki, gdzie pozostają aktywne do końca życia samicy. Jaja są zapładniane natychmiast po wejściu do macicy przez plemniki ze spermateki, które wchodzą w kontakt i penetrują przednią część komórki jajowej. Zapłodnione jajo pozostaje w macicy przez około cztery dni, gdy larwa w stadium rozwojowym zaczyna się rozwijać.
Po kryciu samica może produkować larwy do końca życia. W temperaturze około 25 ° C samica wyda dojrzałe larwy co 9–10 dni, z wyjątkiem pierwszego, który może trwać do 18–20 dni. Niższe temperatury skutkują niższym tempem rozmnażania, podczas gdy wyższe temperatury zwiększają tempo rozmnażania. Zbyt wysokie lub zbyt niskie temperatury mogą całkowicie przerwać rozmnażanie.
Larwa
G. fuscipes larwy w przejściach przez trzy stadiami larwalnymi jak ona dorasta do kiedy w pełni rozwinięte larwa jest odrzucany przez samicę locie. Larwa ma pysk na przednim końcu i dwie przetchlinki na tylnym końcu. Raczej niezwykle larwa spędza większość czasu i karmi się w ciele matki.
Oprócz pożywienia przechowywanego w jajku, pokarm dla trzech stadiów larwalnych pochodzi z gruczołu mlekowego matki . Mleczna wydzielina tego gruczołu jest wydalana z przewodu gruczołowego w górnej części larwy. Larwa zasysa mleczną wydzielinę i przekazuje ją bezpośrednio do jelita środkowego, gdzie jest powoli trawiona i przyswajana.
W przypadku dostarczania powietrza larwa zależy od powietrza dostającego się do sromu samicy. Aby dotrzeć do larwy, powietrze musi przedostać się do tylnych przetchlinek lub płatów polipneustycznych samicy.
Poronienie
Jeśli larwa nie osiągnie pełnego rozmiaru, zostanie przedwcześnie wydalona z macicy. Poroniona larwa umiera. Aborcje mogą wynikać z tego, że matka muchy nie otrzymuje wystarczającej ilości pożywienia, a także z powodu niedbałego obchodzenia się z nią lub wystawiania na działanie środków owadobójczych. Jaja poddaje się aborcji z tych samych powodów.
Poczwarka
Poczwarka jest brązowa ciemno krótsza niż larwy że wytwarzany, a zaokrąglona polypneustic płatów na tylnym końcu. Płatki mają wyraźny kształt i mogą pomóc w odróżnieniu poczwarki G. fuscipes od innych much. Poczwarka ma również twardy futerał na zewnątrz zwany puparium .
Stadium poczwarki trwa około czterech do pięciu tygodni w zależności od temperatury. Wyższe temperatury skracają okres poczwarki. Natomiast niższe temperatury wydłużają okres poczwarki do ponad 50 dni w niektórych klimatach. Jednak ekstremalne temperatury spowodują śmierć.
Dorosły
Gdy młoda dorosła mucha jest gotowa do wynurzenia, rozszerza swoją ptilinum, otwierając koniec puparium. Ze świeżej dziury i otaczającej gleby dorosłe osobniki wynurzają się za pomocą ptiliny, wyrywając się na wierzch gleby i na otwarte powietrze. Na tym etapie ciało dorosłego jest bardzo miękkie, a skrzydła są małe i pomarszczone. Po kilku oddaniach skrzydła rozszerzą się do odpowiedniego rozmiaru. Od chwili pojawienia się muchy do jej pierwszego posiłku dorosły osobnik nazywany jest muchą teneralną. Po spożyciu pierwszego posiłku z krwi muchę określa się mianem muchy nierozerwalnej.
Reprodukcja
Gody
Podczas krycia samce osadzają się na grzbiecie samicy. Klamry na tylnym końcu męskiego brzucha rozwijają się, aby uchwycić koniec żeńskiego brzucha. Ta pozycja godowa może być utrzymana przez godzinę lub dwie przed częściami duetu.
Samice zazwyczaj kojarzą się w młodym wieku, przed lub mniej więcej w tym samym czasie, kiedy przyjmują pierwszą krew. Samice zazwyczaj łączą się w pary tylko raz w życiu, chociaż jest to możliwe więcej niż jeden raz, podczas gdy samce mają tendencję do kilkukrotnego kojarzenia się. Starsze samce mają większe szanse powodzenia niż bardzo młode samce.
Podczas krycia edeagus jest wprowadzany do sromu i sięga do macicy aż do wyjścia spermateka . Spora kula nasienia osadza się tam w postaci spermatoforu . Pod koniec krycia samiec puszcza uścisk na samicy, zanim odleci.
Dystrybucja i siedlisko
G. fuscipes występuje w Afryce Subsaharyjskiej i preferuje obszary o wysokiej wilgotności, a mianowicie biomy, takie jak bagna namorzynowe, lasy deszczowe, brzegi jezior i lasy galeryjne wzdłuż rzek. Zajmują duży blok śródlądowy, skupiony na Demokratycznej Republice Konga, ale obejmujący również ziemie otaczające kraje oprócz Gabonu , Kamerunu i południowej części Czadu .
Ewolucja i taksonomia
Rodzaj Glossina jest uważany za rodzaj izolowany i jest zwykle klasyfikowany do własnej rodziny Glossinidae. Rodzaju jest dalej podzielona na trzy podrodzaje , Morsitans, fusca i Palpalis, z których ostatni jest podrodzaj, do którego G. fuscipes należy. Gatunek jest dalej podzielony na podgatunki G. f. fuscipes , G. f. martinii i G. f. quanzensis .
Zasoby żywnościowe
G. fuscipes żywią się krwią kręgowców i są tradycyjnie opisywane jako ściśle krwiopochodne . Cukry glukozowe nie są niezbędne dla metabolizmu tego gatunku, ponieważ do dystrybucji energii wykorzystuje on układ wahadłowy proliny-alaniny. Zamiast tego trójglicerydy są używane do przechowywania w tłuszczu ciała much i wydzielinach mleka. Jednak naukowcy przeprowadzili eksperymenty laboratoryjne i badania terenowe, które wykazały, że G. fuscipes są w stanie odżywiać się wodą cukrową w laboratorium, a dzikie muchy zawierają pozostałości cukru. Chociaż ciągłe karmienie dużymi stężeniami cukru wydawało się toksyczne , cukier podawany sporadycznie lub w małych stężeniach nie wpływał na śmiertelność i płodność .
Predators
Postacie dorosłe i poczwarki G. fuscipes są źródłem pożywienia dla różnych drapieżników, w tym kręgowców i stawonogów . Jednak żaden gatunek owadożerny nie jest znany wyłącznie z żerowania na muchach G. fuscipes lub tse-tse. Zatem zmniejszenie liczby owadożernych ptaków podczas ogólnych kampanii zwalczania much tse-tse można przypisać równoczesnemu usuwaniu innych gatunków owadów, związanym z insektycydami, niż spadkowi liczby samych much tse-tse.
Trypanosomatoza
Niektóre gatunki trypanosomów , przenoszone przez G. fuscipes i inne gatunki muchówek tse-tse, powodują chorobę zakaźną trypanosomatozę . U ludzi, G. fuscipes trypanosomatiasis jest również znana jako śpiączka . U zwierząt choroba może być znana jako nagana lub surra w zależności od zakażonego gatunku zwierzęcia, a także gatunku trypanosomu. Nagana zwykle odnosi się do choroby, szczególnie u bydła i koni; jednakże jest powszechnie używany do opisania dowolnego typu trypanosomatozy u zwierząt.
Wektory chorobowe i żywiciele
G. fuscipes , obok innych muchy tsetse są znanych wektorów biologiczne z pierwotniaków pasożytów należących do rodzaju Trypanosoma znana przyczyna choroby o tej samej nazwie u różnych gatunków kręgowców, w tym ludzi , antylopy , wołowe , wielbłądy , konie , owce , kozy i świnie . Pasożyty przenoszone są na ludzi poprzez ukąszenia G. fuscipes , które zaraziły się od innych ludzi lub zwierząt będących nosicielami pasożytów chorobotwórczych dla ludzi.
Poniższa tabela podsumowuje te informacje dla gatunków G. fuscipes ; jednakże wymienione poniżej choroby mogą być przenoszone przez inne gatunki muchówek tse-tse oprócz G. fuscipes .
Choroba | Gatunki dotknięte | Środki Trypanosoma | Dystrybucja |
---|---|---|---|
Śpiąca choroba - ostra postać | ludzi | T. brucei rhodesiense | Afryka Wschodnia |
Nagana - ostra forma | bydło antylopy wielbłądy konie |
T. brucei brucei | Afryka |
Nagana - ostra forma | świnie domowe bydło wielbłądy konie |
T. simiae | Afryka |
Surra - postać przewlekła | świnie domowe guziec ( Phacochoerus aethiopicus ) świnie leśne ( Hylochoerus spp. ) |
T. suis | Afryka |
Kontrola populacji
Powstrzymanie Śpiączka i nagana byłoby bardzo korzystne dla społeczności wiejskich w Afryce subsaharyjskiej, łagodzenie ubóstwa i poprawy bezpieczeństwa żywnościowego, dlatego podejmowane są wysiłki w wodzy w lokalnych populacjach G. fuscipes sposobami, takimi jak pestycydy kampanii, odłowu , lub technika sterylnego owada .
Wzajemność
Mikrobiom
Muchy G. fuscipes polegają na bezwzględnie symbiontowym rodzaju bakterii Wigglesworthia, aby uzupełniać swoją dietę w składniki odżywcze niezbędne dla płodności. Układ odpornościowy dorosłych opiera się w podobny sposób na Wigglesworthia do aktywacji i rozwoju. Drugorzędnym, fakultatywnym symbiontem jest rodzaj Sodalis , który występuje w populacjach tse-tse, uważanych za odgrywające rolę w zdolności przenoszenia trypanosomów. Wreszcie trzeci symbiont to rodzaj Wolbachia , przenoszony międzypokoleniowo przez komórki jajowe . W celu zwiększenia przesyłu i przeżywalność Wolbachia nie rozwinęły mechanizmy, które zmieniają odwzorowanie hosta.
Stosując zarówno metody kulturowe, jak i niezależne, wykazano, że kenijskie populacje podgatunków G. f. fuscipes są siedliskiem różnorodnych bakterii. Spośród przebadanych much bakterie zostały wyizolowane z 72% populacji próbki, przy czym zidentyfikowano 23 gatunki bakterii. Spośród nich gromada Firmicutes stanowiła 16 gatunków, z których siedem należy do rodzaju Bacillus .
Zobacz też
Bibliografia
- ^ "Oldstyle id: 4eebe46a7c1df6d1f22972e39c0b1268" . Gatunki 2000 i ITIS Catalog of Life . Gatunek 2000: Naturalis, Leiden, Holandia.
- ^ Dyer, N; Lawton, S; Ravel, S; Choi, K; Lehane, M; Robinson, A; Okedi, L; Hall, M; Solano, P; Donnelly, M (2008). „Filogenetyka molekularna much tsetse (Diptera: Glossinidae) oparta na mitochondrialnych (COI, 16S, ND2) i jądrowych sekwencjach rybosomalnego DNA, z naciskiem na grupę palpalis”. Filogenetyka i ewolucja molekularna . 49 (1): 227–239. doi : 10.1016 / j.ympev.2008.07.011 . PMID 18692147 .
- ^ Aksoy, Serap; O'Neill, Scott L .; Maudlin Ian; Dale, Colin; Robinson, Alan S. (2001). „Perspektywy kontroli afrykańskiej trypanosomatozy poprzez manipulację wektorem tse-tse”. Trendy w parazytologii . 17 (1): 29–35. doi : 10.1016 / S1471-4922 (00) 01850-X .
- ^ a b c d e f g h i j k Pollock, JN (1982). Podręcznik szkoleniowy dla personelu kontrolnego Tsetse: biologia, systematyka i dystrybucja Tsetse; techniki . FAO.
- ^ Pollock, JN (1982). Podręcznik szkoleniowy dla personelu kontrolnego Tsetse: biologia, systematyka i dystrybucja Tsetse; techniki . FAO.
- ^ Solano Philippe; Salou Ernest; Rayaisse Jean-Baptiste; Ravel, Sophie; Gimonneau Geoffrey; Traore, Ibrahima; Bouyer, Jérémy (01.12.2015). - Czy muchy tse-tse żywią się tylko krwią? . Infekcja, genetyka i ewolucja . 36 : 184–189. doi : 10.1016 / j.meegid.2015.09.016 . ISSN 1567-1348 .
- ^ Rogers, David J .; Randolph, Sarah E. (1990). „Oszacowanie wskaźników drapieżnictwa na tse-tse”. Entomologia medyczna i weterynaryjna . 4 (2): 195–204. doi : 10.1111 / j.1365-2915.1990.tb00277.x . ISSN 1365-2915 .
- ^ a b Mulligan, HW (Hugh Waddell) (1970). Afrykańskie trypanosomiazy . Potts, WH (William Herbert). Londyn: Allen i Unwin. ISBN 0046140018 . OCLC 144365 .
- ^ Shaw, APM; Organizacja Narodów Zjednoczonych ds. Wyżywienia i Rolnictwa ONZ; Organizacja, żywność i rolnictwo; Trypanosomiasis, Program Against African (2003). Ekonomiczne wytyczne dotyczące planowania strategicznego kontroli tse-tse i trypanosomatozy w Afryce Zachodniej . Food & Agriculture Org. ISBN 9789251050064 .
- ^ Chen, Xiaoai; Li, Song; Aksoy, Serap (1999-01-01). „Zgodna ewolucja symbionta z jego gatunkami owadów żywicielskich : filogeneza molekularna rodzaju Glossina i endosymbiont związany z bakteriomami, Wigglesworthia glossinidia ”. Journal of Molecular Evolution . 48 (1): 49–58. doi : 10.1007 / PL00006444 . ISSN 1432-1432 . PMID 9873076 .
- ^ Weiss, Brian L .; Wang, Jingwen; Aksoy, Serap (2011-05-31). „Dojrzewanie układu odpornościowego tse-tse wymaga obecności przymusowych symbiontów w larwach” . PLOS Biology . 9 (5): e1000619. doi : 10.1371 / journal.pbio.1000619 . ISSN 1545-7885 . PMC 3104962 . PMID 21655301 .
- ^ Farikou, Oumarou; Njiokou, Flobert; Mbida Mbida, Jean A .; Njitchouang, Guy R .; Dżunga, Hugues Nana; Asonganyi, Tazoacha; Simarro, Pere P .; Cuny Gérard; Geiger, Anne (2010-01-01). „Trójstronne interakcje między muchami tse-tse, Sodalis glossinidius i trypanosomami - podejście epidemiologiczne w dwóch historycznych afrykańskich ogniskach trypanosomatozy u ludzi w Kamerunie”. Infekcja, genetyka i ewolucja . 10 (1): 115–121. doi : 10.1016 / j.meegid.2009.10.008 . ISSN 1567-1348 . PMID 19879380 .
- ^ Alam Uzma; Medlock, Jan; Brelsfoard, Corey; Pais, Roshan; Lohs, Claudia; Balmand, Séverine; Carnogursky, Jozef; Heddi, Abdelaziz; Takac, Peter; Galvani, Alison; Aksoy, Serap (2011). „Zakażenia wolbachią symbiont wywołują silną niezgodność cytoplazmatyczną u muchy tse-tse Glossina morsitans” . PLoS Pathogens . 7 (12): e1002415. doi : 10.1371 / journal.ppat.1002415 . ISSN 1553-7374 . PMC 3234226 . PMID 22174680 .
- ^ Lindh, Jenny M .; Lehane, Michael J. (2011). „Mucha tse-tse Glossina fuscipes fuscipes (Diptera: Glossina) jest siedliskiem zaskakującej różnorodności bakterii innych niż symbionty”. Antonie van Leeuwenhoek . 99 (3): 711–720. doi : 10.1007 / s10482-010-9546-x . ISSN 1572-9699 . PMID 21203841 . S2CID 20948976 .
Zewnętrzne linki
- Media związane z Glossina fuscipes w Wikimedia Commons