Komunikator RNA - Messenger RNA

„Cykl życiowy” mRNA w komórce eukariotycznej . RNA ulega transkrypcji w jądrze ; po przetworzeniu jest transportowany do cytoplazmy i translowany przez rybosom . Ostatecznie mRNA ulega degradacji.

W biologii molekularnej , matrycowego kwasu rybonukleinowego ( mRNA ) jest jednoniciowa cząsteczka od RNA , która odpowiada sekwencji genetycznej z genu , i jest odczytywana przez rybosom w procesie syntezy na białko .

mRNA powstaje podczas procesu transkrypcji , w którym enzym ( polimeraza RNA ) przekształca gen w pierwotny transkrypt mRNA (znany również jako pre-mRNA ). Ten pre-mRNA zazwyczaj nadal zawiera introny , regiony , które nie będą kodować końcowej sekwencji aminokwasowej . Są one usuwane w procesie splicingu RNA , pozostawiając jedynie eksony , regiony, które będą kodować białko. Ta sekwencja egzonu tworzy dojrzałe mRNA . Dojrzały mRNA jest następnie odczytywany przez rybosom i wykorzystując aminokwasy przenoszone przez transferowy RNA (tRNA), rybosom tworzy białko. Proces ten nazywa się tłumaczeniem . Wszystkie te procesy stanowią część centralnego dogmatu biologii molekularnej , który opisuje przepływ informacji genetycznej w systemie biologicznym.

Podobnie jak w DNA , informacja genetyczna w mRNA zawarta jest w sekwencji nukleotydów , które są ułożone w kodony składające się z trzech rybonukleotydów każdy. Każdy kodon koduje określony aminokwas , z wyjątkiem kodonów stop , które kończą syntezę białek. Translacja kodonów na aminokwasy wymaga dwóch innych typów RNA: przenoszącego RNA, które rozpoznaje kodon i dostarcza odpowiedni aminokwas, oraz rybosomalnego RNA (rRNA), głównego składnika maszynerii produkującej białka rybosomu.

Idea mRNA została po raz pierwszy wymyślona przez Sydneya Brennera i Francisa Cricka 15 kwietnia 1960 roku w King's College w Cambridge , podczas gdy François Jacob opowiadał im o niedawnym eksperymencie przeprowadzonym przez samego Arthura Pardee i Jacquesa Monoda . Za namową Cricka Brenner i Jacob natychmiast przystąpili do testowania tej nowej hipotezy i skontaktowali się z Matthew Meselsonem z California Institute of Technology . Latem 1960, Brenner, Jacob i Meselson przeprowadzili eksperyment w laboratorium Meselsona w Caltech, który ustalił istnienie mRNA. Jesienią Jacob i Monod wymyślili nazwę „komunikacyjny RNA” i opracowali pierwsze ramy teoretyczne wyjaśniające jego funkcję. W lutym 1961 roku James Watson ujawnił, że jego grupa badawcza była tuż za nimi z podobnym eksperymentem w mniej więcej tym samym kierunku; Brenner i inni zgodzili się na prośbę Watsona o opóźnienie publikacji wyników ich badań. W rezultacie artykuły Brennera i Watsona zostały opublikowane jednocześnie w tym samym wydaniu Nature w maju 1961, podczas gdy w tym samym miesiącu Jacob i Monod opublikowali swoje teoretyczne ramy dla mRNA w Journal of Molecular Biology .

Synteza, przetwarzanie i funkcja

Krótkie istnienie cząsteczki mRNA zaczyna się od transkrypcji, a ostatecznie kończy się degradacją. Podczas swojego życia cząsteczka mRNA może być również przetwarzana, edytowana i transportowana przed translacją. Eukariotyczne cząsteczki mRNA często wymagają intensywnego przetwarzania i transportu, podczas gdy prokariotyczne cząsteczki mRNA nie. Cząsteczka eukariotycznego mRNA i otaczające ją białka są wspólnie nazywane posłańcem RNP .

Transkrypcja

Transkrypcja ma miejsce, gdy RNA jest kopiowane z DNA. Podczas transkrypcji polimeraza RNA w razie potrzeby tworzy kopię genu z DNA na mRNA. Proces ten różni się nieco u eukariontów i prokariontów. Jedną z istotnych różnic jest to, że prokariotyczna polimeraza RNA wiąże się z enzymami przetwarzającymi DNA podczas transkrypcji, dzięki czemu przetwarzanie może przebiegać podczas transkrypcji. W związku z tym, powoduje to, że nowa nić mRNA staje się dwuniciowa poprzez wytworzenie komplementarnej nici znanej jako nić tRNA, która po połączeniu nie jest w stanie tworzyć struktur z parowania zasad. Co więcej, matrycą dla mRNA jest komplementarna nić tRNA, która jest identyczna pod względem sekwencji z sekwencją antykodonu, z którą wiąże się DNA. Krótkotrwały, nieprzetworzony lub częściowo przetworzony produkt jest określany jako prekursor mRNA lub pre-mRNA ; po całkowitym przetworzeniu jest określany jako dojrzały mRNA .

Eukariotyczne przetwarzanie pre-mRNA

Przetwarzanie mRNA różni się znacznie u eukariontów , bakterii i archeonów . Nieeukariotyczny mRNA jest w istocie dojrzały po transkrypcji i nie wymaga przetwarzania, z wyjątkiem rzadkich przypadków. Eukariotyczny pre-mRNA wymaga jednak kilku etapów przetwarzania przed transportem do cytoplazmy i translacją przez rybosom.

Łączenie

Intensywne przetwarzanie eukariotycznego pre-mRNA, które prowadzi do dojrzałego mRNA, to splicing RNA , mechanizm, w którym introny lub outrony (regiony niekodujące) są usuwane, a eksony (regiony kodujące) są łączone.

Dodatkowa czapka 5 '

Czapeczki 5' (zwany też nakładkę RNA, RNA- 7-methylguanosine pokrywę lub RNA m 7 G nakrywkę) zmodyfikowany nukleotyd guaninę, który został dodany do «z przodu» lub 5' końcu eukariotycznego mRNA krótko po rozpoczęciu transkrypcji. Czapeczka 5' składa się z końcowej reszty 7-metyloguanozyny, która jest połączona wiązaniem 5'-5'-trifosforanowym z pierwszym transkrybowanym nukleotydem. Jego obecność ma kluczowe znaczenie dla rozpoznania przez rybosom i ochrony przed RNazami .

Dodanie czapeczki jest sprzężone z transkrypcją i zachodzi kotranskrypcyjnie, tak że każde z nich wpływa na siebie nawzajem. Krótko po rozpoczęciu transkrypcji koniec 5' syntetyzowanego mRNA jest wiązany przez kompleks syntetyzujący czapeczkę związany z polimerazą RNA . Ten kompleks enzymatyczny katalizuje reakcje chemiczne wymagane do cappingu mRNA. Synteza przebiega jako wieloetapowa reakcja biochemiczna .

Redagowanie

W niektórych przypadkach edytowany będzie mRNA , zmieniając skład nukleotydów tego mRNA. Przykładem u ludzi jest mRNA apolipoproteiny B , który jest edytowany w niektórych tkankach, ale nie w innych. Edycja tworzy wczesny kodon stop, który po translacji wytwarza krótsze białko.

Poliadenylacja

Poliadenylacja jest kowalencyjnym wiązaniem ugrupowania poliadenylilowego z cząsteczką informacyjnego RNA. W organizmach eukariotycznych większość cząsteczek informacyjnego RNA (mRNA) jest poliadenylowana na końcu 3', ale ostatnie badania wykazały, że krótkie odcinki urydyny (oligourydylacji) są również powszechne. Ogon poli (A), jak i białko związane z nim pomoc w ochronie mRNA przed degradacją egzonukleaz. Poliadenylacja jest również ważna dla terminacji transkrypcji, eksportu mRNA z jądra i translacji. mRNA może również ulegać poliadenylowaniu w organizmach prokariotycznych, gdzie ogony poli(A) działają raczej ułatwiając niż utrudniając degradację egzonukleolityczną.

Poliadenylacja zachodzi podczas i/lub bezpośrednio po transkrypcji DNA do RNA. Po zakończeniu transkrypcji łańcuch mRNA jest cięty przez działanie kompleksu endonukleazy związanego z polimerazą RNA. Po rozszczepieniu mRNA, do wolnego końca 3' w miejscu rozszczepienia dodaje się około 250 reszt adenozyny. Ta reakcja jest katalizowana przez polimerazę poliadenylanową. Podobnie jak w przypadku alternatywnego splicingu , może istnieć więcej niż jeden wariant poliadenylacji mRNA.

Występują również mutacje miejsc poliadenylacji. Pierwotny transkrypt RNA genu jest cięty w miejscu addycji poli-A, a do końca 3' RNA dodaje się 100-200 A. Jeśli to miejsce zostanie zmienione, powstanie nienormalnie długi i niestabilny konstrukt mRNA.

Transport

Kolejną różnicą między eukariontami a prokariontami jest transport mRNA. Ponieważ eukariotyczna transkrypcja i translacja są oddzielone przedziałami, eukariotyczne mRNA muszą zostać wyeksportowane z jądra do cytoplazmy — proces, który może być regulowany przez różne szlaki sygnałowe. Dojrzałe mRNA są rozpoznawane przez ich przetworzone modyfikacje, a następnie eksportowane przez pory jądrowe poprzez wiązanie z białkami wiążącymi czapeczkę CBP20 i CBP80, a także kompleksem transkrypcja/eksport (TREX). W organizmach eukariotycznych zidentyfikowano wiele szlaków eksportu mRNA.

W komórkach przestrzennie złożonych niektóre mRNA są transportowane do określonych miejsc na poziomie subkomórkowym. W dojrzałych neuronach pewne mRNA są transportowane z somy do dendrytów . Jedno miejsce translacji mRNA znajduje się w polirybosomach selektywnie zlokalizowanych pod synapsami. mRNA dla Arc/Arg3.1 jest indukowane przez aktywność synaptyczną i lokalizuje się selektywnie w pobliżu aktywnych synaps na podstawie sygnałów generowanych przez receptory NMDA. Inne mRNA również przenoszą się do dendrytów w odpowiedzi na bodźce zewnętrzne, takie jak mRNA β-aktyny. Po wyeksportowaniu z jądra mRNA aktyny łączy się z ZBP1 i podjednostką 40S. Kompleks jest wiązany przez białko motoryczne i jest transportowany do miejsca docelowego (rozszerzenie neurytów) wzdłuż cytoszkieletu. Ostatecznie ZBP1 jest fosforylowany przez Src w celu zainicjowania translacji. W rozwijających się neuronach mRNA są również transportowane do rosnących aksonów, a zwłaszcza do stożków wzrostu. Wiele mRNA jest oznaczonych tak zwanymi „kodami pocztowymi”, które ukierunkowują ich transport do określonej lokalizacji.

Tłumaczenie

Ponieważ prokariotyczne mRNA nie musi być przetwarzane ani transportowane, translacja przez rybosom może rozpocząć się natychmiast po zakończeniu transkrypcji. Można zatem powiedzieć, że translacja prokariotyczna jest sprzężona z transkrypcją i zachodzi kotranskrypcyjnie .

Eukariotyczne mRNA, które zostało przetworzone i przetransportowane do cytoplazmy (tj. dojrzały mRNA), może być następnie poddane translacji przez rybosom. Translacja może zachodzić w rybosomach swobodnie pływających w cytoplazmie lub kierowanych do retikulum endoplazmatycznego przez cząstkę rozpoznającą sygnał . Dlatego, w przeciwieństwie do prokariotów, translacja eukariotyczna nie jest bezpośrednio sprzężona z transkrypcją. Jest nawet możliwe w niektórych kontekstach, że obniżonym poziomom mRNA towarzyszy podwyższony poziom białka, jak zaobserwowano dla poziomów mRNA/białko EEF1A1 w raku piersi.

Struktura

Struktura dojrzałego eukariotycznego mRNA. W pełni obróbce mRNA obejmuje czapeczki 5' , 5' UTR , obszaru kodującego , 3' UTR i ogon poli (A).

Regiony kodujące

Regiony kodujące składają się z kodonów , które są dekodowane i tłumaczone na białka przez rybosom; u eukariontów zwykle w jeden, au prokariontów zwykle w kilka. Regiony kodujące zaczynają się od kodonu start i kończą kodonem stop . Ogólnie kodon start to tryplet AUG, a kodon stop to UAG („bursztynowy”), UAA („ochra”) lub UGA („opalowy”). Regiony kodujące mają tendencję do stabilizacji przez wewnętrzne pary zasad, co utrudnia degradację. Oprócz tego, że kodują białka, części regionów kodujących mogą służyć jako sekwencje regulatorowe w pre-mRNA jako eksonowe wzmacniacze splicingu lub egzonowe tłumiki splicingu .

Regiony nieprzetłumaczone

Regiony nieulegające translacji (UTR) to odcinki mRNA przed kodonem start i za kodonem stop, które nie ulegają translacji, nazywane odpowiednio pięcioma pierwotnymi regionami nieulegającymi translacji (5' UTR) i trzema pierwotnymi regionami nieulegającymi translacji (3' UTR). Regiony te podlegają transkrypcji z regionem kodującym, a zatem są egzonowe, ponieważ są obecne w dojrzałym mRNA. Niepodlegającym translacji regionom przypisano kilka ról w ekspresji genów, w tym stabilność mRNA, lokalizację mRNA i wydajność translacji . Zdolność UTR do wykonywania tych funkcji zależy od sekwencji UTR i może różnić się między mRNA. Warianty genetyczne w 3' UTR również powiązano z podatnością na choroby ze względu na zmianę struktury RNA i translacji białek.

Stabilność mRNA może być kontrolowana przez 5'UTR i/lub 3'UTR ze względu na różne powinowactwo do enzymów degradujących RNA zwanych rybonukleazami i do białek pomocniczych, które mogą promować lub hamować degradację RNA. (Patrz także element stabilizujący bogaty w C .)

Wydajność translacji, w tym czasami całkowite zahamowanie translacji, może być kontrolowana przez UTR. Białka, które wiążą się z 3' lub 5' UTR mogą wpływać na translację poprzez wpływanie na zdolność rybosomu do wiązania się z mRNA. MikroRNA związane z 3'UTR mogą również wpływać na wydajność translacji lub stabilność mRNA.

Uważa się, że cytoplazmatyczna lokalizacja mRNA jest funkcją 3'UTR. Białka, które są potrzebne w określonym regionie komórki, również mogą być tam translowane; w takim przypadku 3'UTR może zawierać sekwencje, które umożliwiają zlokalizowanie transkryptu w tym regionie w celu translacji.

Niektóre elementy zawarte w regionach niepodlegających translacji tworzą charakterystyczną strukturę drugorzędową po transkrypcji do RNA. Te strukturalne elementy mRNA biorą udział w regulacji mRNA. Niektóre, takie jak element SECIS , są celami wiązania białek. Jedna klasa elementów mRNA, ryboprzełączniki , bezpośrednio wiąże małe cząsteczki, zmieniając ich fałd w celu modyfikacji poziomów transkrypcji lub translacji. W takich przypadkach mRNA reguluje się sam.

Poli(A) ogon

Ogon 3' poli(A) to długa sekwencja nukleotydów adeninowych (często kilkaset) dodanych do końca 3' pre-mRNA. Ten ogon promuje eksport z jądra i translację oraz chroni mRNA przed degradacją.

Monocistronowe kontra policistronowe mRNA

Mówi się, że cząsteczka mRNA jest monocistronowa, gdy zawiera informację genetyczną umożliwiającą translację tylko pojedynczego łańcucha białkowego (polipeptydu). Tak jest w przypadku większości eukariotycznych mRNA. Z drugiej strony, policistronowy mRNA niesie kilka otwartych ramek odczytu (ORF), z których każda jest tłumaczona na polipeptyd. Te polipeptydy zwykle pełnią pokrewną funkcję (często są to podjednostki tworzące końcowe białko złożone), a ich sekwencja kodująca jest pogrupowana i regulowana razem w regionie regulatorowym, zawierającym promotor i operator . Większość mRNA znalezionego w bakteriach i archeonach ma charakter policistronowy, podobnie jak ludzki genom mitochondrialny. Dicistronowy lub bicistronowy mRNA koduje tylko dwa białka .

cyrkulacja mRNA

U eukariotów cząsteczki mRNA tworzą koliste struktury w wyniku interakcji między eIF4E i białkiem wiążącym poli(A) , które wiążą się z eIF4G , tworząc mostek mRNA-białko-mRNA. Uważa się, że cyrkularyzacja promuje cykliczne zmiany rybosomów na mRNA, prowadząc do wydajnej czasowo translacji, a także może działać w celu zapewnienia translacji tylko nienaruszonego mRNA (częściowo zdegradowane mRNA charakterystycznie nie ma czapeczki m7G ani ogona poli-A).

Istnieją inne mechanizmy cyrkulacji, szczególnie w mRNA wirusa. mRNA wirusa polio wykorzystuje odcinek koniczyny w kierunku końca 5' do wiązania PCBP2, który wiąże białko wiążące poli(A) , tworząc znajomy krąg mRNA-białko-mRNA. Wirus żółtej karłowatości jęczmienia wiąże się między segmentami mRNA na swoim końcu 5' i końcu 3' (tzw. kissing stem loops), powodując cyrkulację mRNA bez udziału jakichkolwiek białek.

Genomy wirusa RNA (których nici + są tłumaczone jako mRNA) są również powszechnie cyrkularne. Podczas replikacji genomu, cyrkulacja działa w celu zwiększenia szybkości replikacji genomu, cykliczna polimeraza RNA zależna od RNA wirusa jest, zgodnie z hipotezą, cyklicznie taka sama, jak w przypadku rybosomu.

Degradacja

Różne mRNA w tej samej komórce mają różne czasy życia (stabilność). W komórkach bakteryjnych pojedyncze mRNA mogą przetrwać od sekund do ponad godziny. Jednak czas życia wynosi średnio od 1 do 3 minut, co sprawia, że ​​bakteryjne mRNA jest znacznie mniej stabilne niż eukariotyczne mRNA. W komórkach ssaków czas życia mRNA wynosi od kilku minut do dni. Im większa stabilność mRNA, tym więcej białka można wytworzyć z tego mRNA. Ograniczony czas życia mRNA umożliwia komórce szybką zmianę syntezy białek w odpowiedzi na jej zmieniające się potrzeby. Istnieje wiele mechanizmów prowadzących do zniszczenia mRNA, niektóre z nich opisano poniżej.

Degradacja prokariotycznego mRNA

Ogólnie rzecz biorąc, u prokariontów czas życia mRNA jest znacznie krótszy niż u eukariontów. Prokarionty degradują wiadomości, używając kombinacji rybonukleaz, w tym endonukleaz, 3' egzonukleaz i 5' egzonukleaz. W niektórych przypadkach małe cząsteczki RNA (sRNA) o długości od dziesiątek do setek nukleotydów mogą stymulować degradację specyficznych mRNA przez parowanie zasad z sekwencjami komplementarnymi i ułatwianie cięcia rybonukleazy przez RNazę III . Niedawno wykazano, że bakterie mają również rodzaj czapeczki 5' składającej się z trifosforanu na końcu 5' . Usunięcie dwóch fosforanów pozostawia monofosforan 5', powodując zniszczenie wiadomości przez egzonukleazę RNazę J, która degraduje 5' do 3'.

Obrót eukariotycznego mRNA

Wewnątrz komórek eukariotycznych istnieje równowaga między procesami translacji a rozpadem mRNA. Wiadomości podlegające aktywnej translacji są wiązane przez rybosomy , eukariotyczne czynniki inicjacji eIF-4E i eIF-4G oraz białko wiążące poli(A) . eIF-4E i eIF-4G blokują enzym dekapujący ( DCP2 ), a białko wiążące poli(A) blokuje kompleks egzosomów , chroniąc końce wiadomości. Równowaga pomiędzy translacji i rozkład odbija się w wielkości i liczebności cytoplazmatycznych struktur, znanych jako P-ciał poli (A), ogon mRNA ulega skróceniu przez wyspecjalizowane egzonukleaz, które są przeznaczone do specyficznych matrycowego RNA przez połączenie sekwencji cis regulacyjnych na RNA i trans-działające białka wiążące RNA. Uważa się, że usunięcie ogona poli(A) zakłóca kołową strukturę wiadomości i destabilizuje kompleks wiążący czapeczkę . Komunikat jest następnie ulega degradacji albo przez exosome złożonym albo decapping kompleks . W ten sposób wiadomości nieaktywne translacyjnie mogą zostać szybko zniszczone, podczas gdy wiadomości aktywne pozostają nienaruszone. Mechanizm, dzięki któremu translacja zatrzymuje się, a wiadomość jest przekazywana kompleksom rozpadu, nie jest szczegółowo poznany.

Bogaty w AU rozpad pierwiastków

Obecność elementów bogatych w AU w niektórych ssaczych mRNA ma tendencję do destabilizacji tych transkryptów poprzez działanie białek komórkowych, które wiążą te sekwencje i stymulują usuwanie ogona poli(A) . Utrata ogona poli (A), że do wspierania degradacji mRNA, ułatwiając atakowi zarówno exosome złożonym i decapping kompleks . Szybka degradacja mRNA przez elementy bogate w AU jest kluczowym mechanizmem zapobiegania nadprodukcji silnych cytokin, takich jak czynnik martwicy nowotworu (TNF) i czynnik stymulujący tworzenie kolonii granulocytów i makrofagów (GM-CSF). Elementy bogate w AU regulują również biosyntezę protoonkogennych czynników transkrypcyjnych, takich jak c-Jun i c-Fos .

Rozpad za pośrednictwem nonsensu

Wiadomości eukariotyczne podlegają nadzorowi za pomocą rozpadu za pośrednictwem nonsensu (NMD), który sprawdza obecność przedwczesnych kodonów stop (kodonów nonsensownych) w wiadomości. Mogą one powstać w wyniku niepełnego splicingu, rekombinacji V(D)J w adaptacyjnym układzie odpornościowym , mutacji w DNA, błędów transkrypcji, nieszczelnego skanowania przez rybosom powodującego przesunięcie ramki odczytu i innych przyczyn. Wykrycie przedwczesnego kodonu stop inicjuje degradację mRNA przez odkorkowanie 5', usunięcie ogona poli(A) 3' lub cięcie endonukleolityczne .

Małe interferujące RNA (siRNA)

W metazoans , małe interferujące RNA (siRNA) przetwarzanych przez Dicer wprowadza się do kompleksu znany jako indukowany RNA kompleks wyciszający lub RISC. Kompleks ten zawiera endonukleazę, która rozszczepia doskonale komplementarne wiadomości, z którymi wiąże się siRNA. Powstałe fragmenty mRNA są następnie niszczone przez egzonukleazy . siRNA jest powszechnie stosowane w laboratoriach do blokowania funkcji genów w hodowli komórkowej. Uważa się, że jest częścią wrodzonego układu odpornościowego jako obrona przed wirusami dwuniciowego RNA.

MikroRNA (miRNA)

MikroRNA (miRNA) to małe RNA, które zazwyczaj są częściowo komplementarne do sekwencji w matrycowych RNA metazoan. Wiązanie miRNA z wiadomością może hamować translację tej wiadomości i przyspieszać usuwanie ogona poli(A), przyspieszając w ten sposób degradację mRNA. Mechanizm działania miRNA jest przedmiotem aktywnych badań.

Inne mechanizmy rozpadu

Istnieją inne sposoby degradacji wiadomości, w tym między innymi nieustanny rozpad i wyciszanie przez oddziałujące z Piwi RNA (piRNA).

Aplikacje

Podawanie sekwencji informacyjnego RNA zmodyfikowanej nukleozydami może spowodować, że komórka wytworzy białko, które z kolei może bezpośrednio leczyć chorobę lub działać jako szczepionka ; bardziej pośrednio białko może napędzać endogenną komórkę macierzystą do pożądanego różnicowania.

Podstawowe wyzwania terapii RNA koncentrują się na dostarczaniu RNA do odpowiednich komórek. Wyzwania obejmują fakt, że nagie sekwencje RNA ulegają naturalnej degradacji po przygotowaniu; mogą uruchomić system odpornościowy organizmu, aby zaatakować ich jako najeźdźcę; i są nieprzepuszczalne dla błony komórkowej . Gdy znajdą się w komórce, muszą opuścić mechanizm transportowy komórki, aby podjąć działanie w cytoplazmie , w której znajdują się niezbędne rybosomy .

Pokonując te wyzwania, mRNA jako środek terapeutyczny został po raz pierwszy przedstawiony w 1989 r. „po opracowaniu szeroko stosowanej techniki transfekcji in vitro”. W latach 90. opracowano szczepionki mRNA na spersonalizowane nowotwory, oparte na mRNA niemodyfikowanym nukleozydami. Terapie oparte na mRNA są nadal badane jako metoda leczenia lub terapii zarówno raka, jak i chorób autoimmunologicznych, metabolicznych i zapalnych dróg oddechowych. Terapie edycji genów, takie jak CRISPR, mogą również skorzystać na wykorzystaniu mRNA do indukowania komórek do wytwarzania pożądanego białka Cas .

Od 2010 roku szczepionki RNA i inne terapeutyki RNA są uważane za „nową klasę leków”. Pierwsze szczepionki oparte na mRNA odebrany ograniczony zezwolenia i walcowano na całym świecie podczas COVID-19 pandemii przez firmę Pfizer BioNTech COVID-19 szczepionki i Moderna , na przykład.

Zobacz też

Bibliografia

Dalsza lektura

Zewnętrzne linki