Nakłucie żyły - Venipuncture

Nakłucie żyły
Film z nakłucia żyły

W medycynie, nakłucie lub nakłuwania żył jest sposób uzyskiwania dostępu do podawania dożylnego w celu żylnej pobierania próbek krwi (zwany także Phlebotomy ) lub dożylnego podawania leku . W służbie zdrowia, procedura ta jest wykonywana przez diagnostyka laboratoryjna , lekarzy , niektóre EMTs , sanitariuszy , phlebotomists , dializowanych techników i innego personelu pielęgniarskiego. W weterynarii zabieg wykonują lekarze weterynarii i technicy weterynarii .

Niezbędne jest przestrzeganie standardowej procedury pobierania próbek krwi, aby uzyskać dokładne wyniki laboratoryjne. Każdy błąd w pobieraniu krwi lub napełnianiu probówek może prowadzić do błędnych wyników laboratoryjnych.

Nakłucie żyły jest jedną z najczęściej wykonywanych rutynowo procedur inwazyjnych i wykonuje się ją z jednego z pięciu powodów:

  1. pozyskiwanie krwi do celów diagnostycznych;
  2. do monitorowania poziomów składników krwi;
  3. do podawania terapii terapeutycznych, w tym leków, odżywiania lub chemioterapii;
  4. usuwanie krwi z powodu nadmiernego stężenia żelaza lub erytrocytów ( czerwonych krwinek ); lub
  5. W celu zebrania krwi do późniejszych zastosowań, głównie do transfuzji albo u dawcy lub w innej osoby .

Analiza krwi jest ważnym narzędziem diagnostycznym dostępnym klinicystom w opiece zdrowotnej.

Krew najczęściej pobierana jest z żył powierzchownych kończyny górnej. Żyła pośrodkowa łokcia , która leży w obrębie dołu łokciowego przednio do łokcia, znajduje się blisko powierzchni skóry bez wielu dużych nerwów umieszczony w pobliżu. Inne żyły, które można wykorzystać w dole łokciowym do nakłucia żyły, to żyła odgłowia , podstawna i środkowa żyła przedramienna .

Niewielkie ilości krwi można pobrać z opuszki palca i pobrać od niemowląt za pomocą nakłucia z pięty lub z żył głowy za pomocą uskrzydlonej igły infuzyjnej .

Flebotomia (nacięcie żyły) to również leczenie niektórych chorób, takich jak hemochromatoza oraz czerwienica pierwotna i wtórna .

Komplikacje

Badanie przeprowadzone w 1996 roku na dawcach krwi (do oddawania krwi używa się większej igły niż do rutynowego nakłucia żyły) wykazało, że 1 na 6300 dawców doznał urazu nerwu.

Ekwipunek

Istnieje wiele sposobów pobierania krwi z żyły, a zastosowana metoda zależy od wieku osoby, dostępnego sprzętu i rodzaju wymaganych badań.

Większość pobierania krwi w USA, Wielkiej Brytanii, Kanadzie i Hongkongu odbywa się za pomocą systemu rurek próżniowych. Dwa popularne systemy to Vacutainer (Becton, Dickinson i spółka) oraz Vacuette (Greiner Bio-One). Sprzęt składa się z plastikowego adaptera, zwanego również rurką lub uchwytem/piastą igły, igły podskórnej i rurki próżniowej. W pewnych okolicznościach można użyć strzykawki, często z igłą motylkową , czyli plastikowym cewnikiem przymocowanym do krótkiej igły. W krajach rozwijających się preferowaną metodą pobierania krwi jest system rurek próżniowych.

Z rurami próżniowymi lub próżniowymi

Butelki na krew Vacutainer

Greiner Bio-One wyprodukował pierwszą w historii plastikową próżniową probówkę do pobierania krwi w 1985 roku pod marką VACUETTE. Obecnie wiele firm sprzedaje lampy próżniowe, ponieważ patent na to urządzenie jest już w domenie publicznej. Rury te są produkowane z określoną objętością gazu usuwaną ze szczelnie zamkniętej tuby. Kiedy igła z kielicha lub urządzenia transferowego zostanie włożona do korka, próżnia probówki automatycznie wciąga wymaganą objętość krwi.

Podstawowy system probówek próżniowych (ETS) składa się z igły, uchwytu probówki i probówek próżniowych. Igła jest przymocowana do uchwytu probówki przez flebotomistę przed pobraniem lub może pochodzić od producenta jako jedna jednostka. Igła wystaje przez koniec uchwytu rurki i ma igłę na każdym końcu. Po uprzednim oczyszczeniu miejsca nakłucia żyły i założeniu opaski uciskowej, flebotomista odkręca igłę przymocowaną do uchwytu probówki, wprowadza igłę do żyły, a następnie wsuwa opróżnione probówki do uchwytu probówki, gdzie korek probówki przebija tylny koniec żyły. igła. Podciśnienie w probówce automatycznie pobiera potrzebną krew bezpośrednio z żyły. Wiele rurek próżniowych może być kolejno dołączanych i usuwanych z pojedynczej igły, co pozwala na pobranie wielu próbek w ramach jednej procedury. Jest to możliwe dzięki rękawowi na wiele próbek, który jest elastycznym gumowym mocowaniem na tylnym końcu kaniuli igły, który uszczelnia igłę, aż zostanie wypchnięta z drogi. Zapobiega to swobodnemu odpływowi krwi z tylnej części igły wprowadzonej do żyły, ponieważ każda probówka jest usuwana, a następna jest nabijana. Przepisy bezpieczeństwa OSHA wymagają, aby igły lub uchwyty rurek były wyposażone w urządzenie zabezpieczające, które zakrywa igłę po zabiegu, aby zapobiec przypadkowemu ukłuciu się igłą.

Dostępne są również złączki i adaptery używane do napełniania probówek próżniowych z zestawów igieł motylkowych i strzykawek.

Do wyboru jest kilka rozmiarów igieł. Najczęściej używane są następujące: igła 21g (zielona góra), igła 22g (czarna góra), igła motylkowa 21g (zielona etykieta), igła motylkowa 23g (jasnoniebieska etykieta) i 25g (pomarańczowa lub ciemna) niebieska etykieta) igła motylkowa (jednak ta igła jest używana tylko w pediatrii lub w skrajnych przypadkach, ponieważ jest tak mała, że ​​często może powodować hemolizę próbki krwi). Dostępne są również różne rozmiary i objętości probówek i butelek dla różnych wymagań testowych.

Dodatki i kolejność losowania

Probówki, w których pobierana jest krew, mogą zawierać jeden lub kilka dodatków. Ogólnie badania wymagające krwi pełnej wymagają pobrania próbek krwi do probówek zawierających pewną formę antykoagulantu EDTA . EDTA chelatuje wapń, aby zapobiec krzepnięciu. EDTA jest preferowany w testach hematologicznych, ponieważ minimalnie uszkadza morfologię komórek. Cytrynian sodu jest antykoagulantem stosowanym w próbkach pobranych do testów krzepnięcia. Większość testów chemicznych i immunologicznych jest wykonywana na surowicy, która jest wytwarzana przez krzepnięcie, a następnie oddzielenie próbki krwi za pomocą wirówki. Próbki te są pobierane do probówki bez dodatku lub zawierającej aktywator krzepnięcia . Ten aktywator krzepnięcia może zakłócać niektóre testy , dlatego w takich przypadkach zalecana jest zwykła probówka, ale opóźni test. Probówki zawierające heparynę litową lub heparynę sodową są również powszechnie używane w różnych testach chemicznych, ponieważ nie wymagają krzepnięcia i można je odwirować natychmiast po pobraniu. Do testów glukozy stosuje się kombinację fluorku sodu i szczawianu potasu, ponieważ dodatki te zapobiegają krzepnięciu i zatrzymują glikozę, dzięki czemu poziom glukozy we krwi jest zachowany po pobraniu. Inną specjalistyczną probówką jest nieprzezroczysta, bursztynowa probówka używana do pobierania krwi dla analitów wrażliwych na światło, takich jak bilirubina .

Probówki są oznakowane dodatkiem, który zawierają, ale korek na każdej probówce jest również oznaczony kolorem zgodnie z dodatkiem. Chociaż kolory różnią się w zależności od producenta, kolory zatyczek są generalnie związane z każdym dodatkiem, jak podano poniżej. Ponieważ dodatki z każdej probówki można pozostawić na igle używanej do napełniania probówek, należy je pobierać w określonej kolejności, aby zapewnić, że zanieczyszczenie krzyżowe nie wpłynie negatywnie na badanie próbek, jeśli pobiera się wiele probówek jednocześnie. „Kolejność losowania” różni się w zależności od metody zbierania. Poniżej w kolejności losowania ogólnie wymaganej dla metody zbierania systemu rurek próżniowych (ETS) znajdują się najpopularniejsze rurki, wyszczególniając dodatek i kolor:

Vacutainer / probówce typu do nakłucia / flebotomię   edycja
Kolor lub typ korka tubki Przyłączeniowy Wykorzystanie i komentarze
Butelka na posiew krwi Polianetosulfonian sodu ( antykoagulant ) i pożywka wzrostowa dla drobnoustrojów Zwykle rysowany jako pierwszy, aby zminimalizować ryzyko zanieczyszczenia. W jednym pobraniu krwi zbiera się zazwyczaj dwie butelki; jeden dla organizmów tlenowych i jeden dla organizmów beztlenowych .
Jasny niebieski cytrynian sodu (antykoagulant) Testy krzepnięcia, takie jak czas protrombinowy (PT) i czas częściowej tromboplastyny (PTT) i czas trombinowy (TT). Tuba musi być wypełniona w 100%.
Zwykły czerwony Bez dodatku Surowica : Całkowita aktywność dopełniacza , krioglobuliny
Złoty (czasami czerwony i szary „tygrys top”) Aktywator krzepnięcia i żel oddzielający surowicę Rurka oddzielająca surowicę : Odwrócone rurki sprzyjają krzepnięciu. Większość testów chemicznych, endokrynologicznych i serologicznych, w tym zapalenie wątroby i HIV .
Ciemnozielony Heparyna sodowa (antykoagulant) Testowanie chromosomów, typowanie HLA , amoniak , mleczan
miętowo-zielony Heparyna litowa (antykoagulant) Plazma . Inwersje rurek zapobiegają krzepnięciu
Lawenda („fioletowy”) EDTA ( chelator /antykoagulant) Krew pełna : CBC , ESR , test Coombsa , przeciwciała płytkowe , cytometria przepływowa , poziomy takrolimusu i cyklosporyny we krwi
Różowy EDTA (chelator / antykoagulant) Typowanie krwi i dopasowywanie krzyżowe , bezpośredni test Coombsa , miano wirusa HIV
Królewski niebieski EDTA (chelator / antykoagulant) Pierwiastki śladowe, metale ciężkie, większość poziomów leków, toksykologia
Dębnik EDTA (chelator / antykoagulant) Ołów
Szary Glukoza , mleczan
Żółty Kwas-cytrynian-dekstroza A (antykoagulant) Typowanie tkanek , badania DNA, kultury HIV
Biała Perła") Żel rozdzielający i (K 2 ) EDTA PCR dla adenowirusa , toksoplazmy i HHV-6

U dzieci

Zastosowanie jonoforezy lidokainowej jest skuteczne w zmniejszaniu bólu i łagodzeniu stresu podczas nakłucia żyły u dzieci. Wykazano, że bezigłowy system dostarczania lignokainy w proszku zmniejsza ból związany z nakłuciem żyły u dzieci. Szybkie znieczulenie skórne można uzyskać przez miejscowe znieczulenie nasiękowe, ale może to wywołać niepokój u dzieci przestraszonych igłami lub zniekształceniami skóry, utrudniając dostęp do naczyń i zwiększając ryzyko kontaktu igły z pracownikami służby zdrowia. Znieczulenie skórne można również uzyskać bez użycia igieł przez miejscowe zastosowanie środków znieczulających miejscowo lub jonoforezę lidokainą. W przeciwieństwie do tego, nieinwazyjne znieczulenie skórne można wprowadzić w ciągu 5–15 minut bez zniekształcania tkanek leżących pod spodem za pomocą jonoforezy lidokainy, w której stały prąd elektryczny ułatwia penetrację przez skórę dodatnio naładowanych cząsteczek lidokainy po umieszczeniu pod elektrodą dodatnią.

W jednym z badań stwierdzono, że jontoforetyczne podawanie lidokainy było bezpieczne i skuteczne w zapewnianiu znieczulenia skórnego do nakłucia żyły u dzieci w wieku 6–17 lat. Ta technika może nie mieć zastosowania do wszystkich dzieci. Dalsze badania mogą dostarczyć informacji na temat minimalnej skutecznej dawki jontoforetycznej do znieczulenia skórnego u dzieci oraz porównania skuteczności znieczulenia i satysfakcji z jonoforezy lidokainy z miejscowymi kremami znieczulającymi i infiltracją podskórną.

Niefarmakologiczne leczenie bólu związanego z nakłuciem żyły u dzieci obejmuje hipnozę i rozproszenie uwagi. Zabiegi te zmniejszyły zgłaszany przez siebie ból, a w połączeniu z terapią poznawczo-behawioralną (CBT) zmniejszenie bólu było jeszcze większe. Inne interwencje okazały się nieskuteczne i są to sugestie, wydmuchiwanie powietrza i odwracanie uwagi podczas coachingu rodziców nie różniły się od kontroli bólu i stresu.

Z igłą i strzykawką

Niektórzy pracownicy służby zdrowia wolą używać techniki strzykawki i igły do ​​nakłucia żyły. Sarstedt produkuje system pobierania krwi (S-Monovette), który wykorzystuje tę zasadę. Ta metoda może być preferowana u osób starszych, z rakiem, ciężkimi oparzeniami, otyłością lub u których żyły są zawodne lub kruche. Ponieważ strzykawki są obsługiwane ręcznie, wielkość zastosowanego ssania można łatwo kontrolować. Jest to szczególnie przydatne, gdy żyły są małe, które mogą zapaść się pod wpływem zasysania próżniowej rurki. W przypadku dzieci lub w innych okolicznościach, w których ilość uzyskanej krwi może być ograniczona, pomocne może być poznanie ilości krwi, którą można uzyskać przed rozdzieleniem jej na różne dodatki, których będzie wymagać laboratorium. Inną alternatywą jest pobieranie krwi z założonych na stałe kaniul.

Posiewy krwi

Czasami wymagane jest pobranie posiewu krwi. Kultura określi, czy we krwi są patogeny. Normalnie krew jest sterylna. Podczas pobierania krwi z kultur zamiast alkoholu należy używać sterylnego roztworu, takiego jak betadyna . Odbywa się to za pomocą sterylnych rękawiczek, nie wycierając roztworu chirurgicznego, nie dotykając miejsca nakłucia ani w żaden sposób nie naruszając sterylnego procesu. Istotne jest, aby zabieg był wykonywany w możliwie najbardziej sterylny sposób, ponieważ utrzymująca się obecność komensali skóry w posiewach krwi może wskazywać na zapalenie wsierdzia, ale najczęściej są one wykrywane jako zanieczyszczenia. Zachęca się do stosowania ściernej metody przygotowania skóry. To usuwa górne warstwy martwych komórek skóry wraz z ich zanieczyszczającymi bakteriami. Tradycyjnie używano jodopowidonu, ale w Wielkiej Brytanii preferowany jest 2% roztwór chlorheksydyny w 70% etanolu lub alkoholu izopropylowym i należy dać mu czas na wyschnięcie. Podobnym roztworem należy również zdezynfekować wierzchy wszelkich pojemników używanych do pobierania posiewów krwi. Niektóre laboratoria będą aktywnie zniechęcać do używania jodu, gdy uważa się, że jod degraduje gumowy korek, przez który krew dostaje się do butelki, umożliwiając w ten sposób przedostanie się zanieczyszczeń do pojemnika.

Krew pobierana jest do specjalnych butelek transportowych, które są jak rurki próżniowe, ale mają inny kształt. Butelka do posiewu krwi zawiera pożywkę transportową, aby zachować wszelkie obecne mikroorganizmy podczas transportu do laboratorium w celu hodowli. Ponieważ nie wiadomo, czy patogeny są beztlenowe (żyjące bez tlenu) czy tlenowe (żyjące z tlenem), krew jest pobierana w celu zbadania obu. Butelka tlenowa jest napełniana jako pierwsza, a następnie butla beztlenowa. Jeśli jednak pobieranie odbywa się za pomocą strzykawki, najpierw napełnia się butelkę beztlenową. Jeśli używany jest zestaw do pobierania motyli, najpierw napełnia się butlę tlenową, tak aby całe powietrze z przewodu zostało uwolnione do butli zawierającej tlen.

Specjalnie zaprojektowane butelki do pobierania posiewów krwi eliminują potrzebę pobierania strzykawki lub metody motylkowej. Te specjalnie zaprojektowane butelki mają długie szyjki, które pasują do uchwytów probówek próżniowych, które są używane do regularnego pobierania nakłuć z żyły. Butelki te umożliwiają również pobranie innych próbek krwi przez probówki próżniowe, które można pobrać bez dodatkowego nakłucia żyły.

Ilość pobranej krwi ma kluczowe znaczenie dla optymalnej regeneracji mikroorganizmów. Do 10 ml krwi jest typowe, ale może się różnić w zależności od zaleceń producenta butelki do pobierania. Pobieranie od niemowląt i dzieci wynosi od 1 do 5 ml. Jeśli zbierze się za mało krwi, stosunek bulionu krwi do składników odżywczych zahamuje rozwój drobnoustrojów. Jeśli zebrane zostanie zbyt dużo krwi, istnieje ryzyko anemii wywołanej w szpitalu, a stosunek bulionu krwi do składników odżywczych przechyli się w przeciwnym kierunku, co również nie sprzyja optymalnemu wzrostowi.

Butelki są następnie inkubowane w wyspecjalizowanych jednostkach przez 24 godziny przed badaniem i/lub testowaniem przez technika laboratoryjnego. Ten etap pozwala bardzo małej liczbie bakterii (potencjalnie 1 lub 2 organizmów) na namnażanie się do poziomu wystarczającego do identyfikacji +/- badania oporności na antybiotyki. Nowoczesne butelki do posiewów krwi mają w podstawie wskaźnik, który zmienia kolor w obecności bakterii i może być automatycznie odczytywany przez maszynę. (Z tego powodu naklejki z kodami kreskowymi znajdujące się na tych butelkach nie powinny być usuwane, ponieważ są używane przez zautomatyzowane systemy laboratorium.)

Pobieranie próbek krwi od zwierząt

Próbki krwi żywych zwierząt laboratoryjnych można pobierać następującymi metodami:

  • Pobieranie krwi niewymagające znieczulenia:
    • Żyła odpiszczelowa (szczur, myszy, świnka morska)
    • Żyła grzbietowa stopy (szczur, myszy)
  • Pobranie krwi wymagające znieczulenia (znieczulenie miejscowe/ogólne):
    • Żyła ogonowa (szczur, myszy)
    • Odcinanie ogona (myszy)
    • Zatoki oczodołu (szczur, myszy)
    • Żyła szyjna (szczur, myszy)
    • Kaniula tymczasowa (szczur, mysz)
    • Kaniulacja naczyń krwionośnych (świnka morska, fretka)
    • Żyła stępu (świnka morska)
    • Żyła lub tętnica brzeżna ucha (królik)
  • Procedura terminalowa:
    • Nakłucie serca (szczur, mysz, świnka morska, królik, fretka)
    • Zatoki oczodołu (szczur, myszy)
    • Tylna żyła główna (szczur, myszy)

U zwierząt doświadczalnych bardzo ważna jest objętość pobranej próbki krwi. Wszystkie nieterminalne pobieranie krwi bez uzupełniania płynów jest ograniczone do 10% całkowitej objętości krwi krążącej u zdrowych, zdrowych, dorosłych zwierząt jednorazowo i pobieranie można powtórzyć po trzech do czterech tygodniach. W przypadku, gdy wymagane są powtarzane próbki krwi w krótkich odstępach czasu, co 24 godziny można pobrać maksymalnie 0,6 ml/kg/dzień lub 1,0% całkowitej objętości krwi zwierzęcia. Szacowana objętość krwi u dorosłych zwierząt wynosi od 55 do 70 ml/kg masy ciała. Należy zadbać o zwierzęta starsze i otyłe. Jeśli objętość pobranej krwi przekracza więcej niż 10% całkowitej objętości krwi, może być wymagana wymiana płynów. Roztwór Ringera z dodatkiem mleczanu (LRS) jest zalecany jako najlepszy płyn zastępujący przez National Institutes of Health (NIH). Jeżeli objętość pobranej krwi przekracza ponad 30% całkowitej objętości krwi krążącej, należy zadbać o to, aby zwierzę nie cierpiało na hipowolemię.

Badania alkoholu we krwi

Generalnie nie zaleca się stosowania alkoholu izopropylowego do oczyszczania miejsca nakłucia żyły podczas pobierania próbki do badania na alkohol we krwi . Jest to związane w dużej mierze z potencjalnymi konsekwencjami prawnymi związanymi ze stosowaniem środków czyszczących na bazie alkoholu, które mogą teoretycznie wpływać na analizę. Wprowadzono na rynek wiele policyjnych zestawów do zbiórki alkoholu, które zawierają środek konserwujący z fluorku sodu/szczawianu potasu i środki czyszczące nie zawierające alkoholu, aby zapewnić prawidłowe zbieranie. W tym przypadku zalecaną alternatywą dla alkoholu izopropylowego jest użycie mydła i gorącej wody lub wacika powidonowo-jodowego .

Zobacz też

Bibliografia

Zewnętrzne linki