Receptor dopełniacza 1 - Complement receptor 1
Receptor dopełniacza typu 1 ( CR1 ) znany również jako receptor C3b/C4b lub CD35 (klaster różnicowania 35) jest białkiem, które u ludzi jest kodowane przez gen CR1 .
Gen ten należy do rodziny regulatorów aktywacji dopełniacza (RCA) i znajduje się w regionie „klaster RCA” chromosomu 1. Gen koduje monomeryczną glikoproteinę błonową pojedynczego przejścia typu I znajdującą się na erytrocytach , leukocytach , kłębuszkowych podocytach , hialocyty i pęcherzykowe komórki dendrytyczne śledziony . Układ grup krwi Knopsa to układ antygenów znajdujących się na tym białku. Białko pośredniczy w wiązaniu komórkowym z cząsteczkami i kompleksami immunologicznymi, które mają aktywowany dopełniacz. Zmniejszenie ekspresji tego białka i/lub mutacje w jego genie są związane z nowotworami pęcherzyka żółciowego, kłębuszkowym zapaleniem kłębuszków nerkowych naczyń włosowatych , układowym toczniem rumieniowatym i sarkoidozą . Mutacje w tym genie powiązano również z redukcją rozety Plasmodium falciparum , zapewniając ochronę przed ciężką malarią. Scharakteryzowano alternatywne warianty splicingowe specyficzne dla allelu, kodujące różne izoformy. Opisano dodatkowe izoformy specyficzne dla alleli, w tym formę sekrecyjną, ale nie zostały one w pełni scharakteryzowane.
U naczelnych CR1 służy jako główny system przetwarzania i usuwania opsonizowanych kompleksów immunologicznych dopełniacza . Wykazano, że CR1 może działać jako negatywny regulator kaskady dopełniacza , pośredniczyć w przyleganiu immunologicznym i fagocytozie oraz hamować zarówno szlak klasyczny, jak i alternatywny. Liczba cząsteczek CR1 zmniejsza się wraz ze starzeniem się erytrocytów u zdrowych osób, a także zmniejsza się w stanach patologicznych, takich jak toczeń rumieniowaty układowy (SLE), zakażenie wirusem HIV , niektóre niedokrwistości hemolityczne i inne stany z kompleksami immunologicznymi . U myszy CR1 jest wariantem genu receptora dopełniacza 2 (CR2) o alternatywnym splicingu.
Niektóre allele tego genu są statystycznie powiązane ze zwiększonym ryzykiem rozwoju choroby Alzheimera o późnym początku .
Region genów
U ludzi gen CR1 znajduje się na długim ramieniu chromosomu 1 w paśmie 32 (1q32) i znajduje się w kompleksie genów immunoregulacyjnych. W porządku 5'-3' genami w tym regionie są: białko kofaktor błonowy – CR1 – receptor dopełniacza typu 2 – czynnik przyspieszający rozpad – białko wiążące C4.
- Białko kofaktora błonowego jest szeroko rozpowszechnioną glikoproteiną regulującą wiążącą C3b/C4b układu dopełniacza;
- czynnik przyspieszający rozpad (DAF: CD55: antygen Cromer) chroni komórki gospodarza przed uszkodzeniem, w którym pośredniczy dopełniacz, regulując aktywację konwertaz C3 na powierzchni komórek gospodarza;
- receptor dopełniacza 2 jest receptorem C3d.
Czynnik H , inne białko immunoregulacyjne, również mapuje to miejsce.
Struktura genów i izoformy
Kanoniczny gen Cr2/CD21 ssaków naczelnych wytwarza dwa typy receptora dopełniacza (CR1, ok. 200 kDa; CR2, ok. 145 kDa) poprzez alternatywny splicing mRNA. Mysi gen Cr2 zawiera 25 eksonów; wspólny pierwszy egzon jest łączony z eksonem 2 i eksonem 9 w transkryptach kodujących odpowiednio CR1 i CR2. Transkrypt z otwartą ramką odczytu 4224 nukleotydów koduje długą izoformę CR1; przewiduje się, że jest to białko składające się z 1408 aminokwasów, które obejmuje 21 krótkich powtórzeń konsensusowych (SCR) o długości ca. 60 aminokwasów każdy, plus regiony transbłonowe i cytoplazmatyczne. Izoforma CR2 (1032 aminokwasy) jest kodowana przez krótszy transkrypt (3096 kodujących nukleotydów), w którym brakuje eksonów 2–8 kodujących SCR1-6. CR1 i CR2 na mysich komórkach B tworzą kompleksy z dodatkowym kompleksem aktywacyjnym zawierającym białka CD19, CD81 i fragilis/Ifitm (mysie odpowiedniki LEU13).
Receptor dopełniacza 2 (CR 2) gen naczelnych wykazuje jedynie mniejszą izoformę, CR2; CR1 naczelnych, który podsumowuje wiele domen strukturalnych i przypuszczalnych funkcji CR1 pochodzącego z Cr2 u naczelnych, jest kodowany przez odrębny gen CR1 (najwyraźniej pochodzący z genu Crry zwierząt naczelnych).
Izoformy CR1 i CR2 pochodzące z genu Cr2 posiadają tę samą sekwencję C-końcową, tak że połączenie i aktywacja przez CD19 powinny być równoważne. CR1 może wiązać się z kompleksami C4b i C3b, podczas gdy CR2 (mysi i ludzki) wiąże się z kompleksami związanymi z C3dg. CR1, białko powierzchniowe wytwarzane głównie przez pęcherzykowe komórki dendrytyczne , wydaje się mieć kluczowe znaczenie dla wytwarzania odpowiednio aktywowanych komórek B centrum rozmnażania i odpowiedzi dojrzałych przeciwciał na infekcję bakteryjną.
Najpopularniejszy wariant alleliczny ludzkiego genu CR1 (CR1*1) składa się z 38 eksonów o długości 133 kb kodujących białko o 2039 aminokwasach o przewidywanej masie cząsteczkowej 220 kDa. Duże insercje i delecje dały początek czterem strukturalnie wariantom genów, a niektóre allele mogą rozciągać się do 160 kb i 9 dodatkowych eksonów. Transkrypcji Miejsce startu mapowane do 111 par zasad w górę od translacji kodon inicjacyjny ATG i jest kolejnym możliwym miejsce startu 29 bp, na początkowych etapach. Region promotora nie ma wyraźnej sekwencji kasety TATA . Gen ulega ekspresji głównie na erytrocytach , monocytach , neutrofilach i komórkach B, ale jest również obecny na niektórych limfocytach T , komórkach tucznych i podocytach kłębuszkowych .
Struktura
Kodowane białko ma 47-aminokwasowy peptyd sygnałowy , domenę zewnątrzkomórkową zawierającą 1930 reszt, 25-resztową domenę transbłonową i 43-aminokwasowy region cytoplazmatyczny C-końcowy. Sekwencję liderową i region 5 'niepodlegający translacji są zawarte w jednym egzon. Dużą domenę zewnątrzkomórkową CR1, która ma 25 potencjalnych miejsc N-glikozylacji , można podzielić na 30 krótkich powtórzeń konsensusowych (SCR) (znanych również jako powtórzenia białka kontrolnego dopełniacza (CCP) lub domeny sushi), z których każde ma od 60 do 70 aminokwasów . Homologia sekwencji między SCR waha się między 60 a 99 procent. Region transbłonowy jest kodowany przez 2 egzony, a domena cytoplazmatyczna i regiony nie podlegające translacji 3' są kodowane przez dwa oddzielne eksony.
Około 30 SCR jest dalej pogrupowanych w cztery dłuższe regiony zwane długimi powtórzeniami homologicznymi (LHR), z których każdy koduje białko o około 45 kDa i jest oznaczony jako LHR-A, -B, -C i -D. Pierwsze trzy mają siedem SCR, podczas gdy LHR-D ma 9 lub więcej. Każdy LHR składa się z 8 egzonów i w obrębie LHR, SCR 1, 5 i 7 są kodowane przez pojedynczy egzon, SCR 2 i 6 są kodowane przez 2 egzony, a jeden kod egzonu dla SCR 3 i 4. Wydaje się, że LHR powstał w wyniku nierównego przejścia, a zdarzenie, które dało początek LHR-B, wydaje się mieć miejsce w czwartym eksonie LHR-A lub -C. Do tej pory rozwiązano strukturę atomową dla SCR 15-16, 16 i 16-17.
Allele
Cztery znane ludzkie allele kodują białka o przewidywanych masach cząsteczkowych 190 kDa, 220 kDa, 250 kDa i 280 kDa. Warianty o wielu rozmiarach (55-220 kDa) występują również wśród naczelnych innych niż człowiek i częściowa duplikacja na końcu aminowym (gen podobny do CR1), która koduje krótkie (55-70 kDa) formy ulegające ekspresji na erytrocytach innych niż ludzkie. Te krótkie formy CR1, z których niektóre są zakotwiczone w glikozylofosfatydyloinozytolu (GPI), ulegają ekspresji na erytrocytach, a forma CR1 o masie 220 kDa ulega ekspresji na monocytach. Gen obejmujący powtórzenia jest wysoce konserwatywny u naczelnych, prawdopodobnie ze względu na zdolność powtórzeń do wiązania dopełniacza. LHR-A wiąże się preferencyjnie ze składnikiem dopełniacza C4b: LHR-B i LHR-C wiążą się z C3b, a także, chociaż z mniejszym powinowactwem, z C4b. Co ciekawe, ludzki gen CR1 wydaje się mieć niezwykłą konformację białkową, ale znaczenie tego odkrycia nie jest jasne.
Średnia liczba cząsteczek receptora dopełniacza 1 (CR1) na erytrocytach u zdrowych osób mieści się w zakresie 100-1000 cząsteczek na komórkę. Istnieją dwa współdominujące allele – jeden kontrolujący wysoką, a drugi niską ekspresję. Homozygoty różnią się współczynnikiem 10-20: heterozygoty zazwyczaj mają 500-600 kopii na erytrocyt. Wydaje się, że te dwa allele powstały przed dywergencją populacji europejskiej i afrykańskiej.
Rozeta
Białko błonowe erytrocytów 1 Plasmodium falciparum (PfEMP1) oddziałuje z niezakażonymi erytrocytami. Uważa się, żeta „lepkość”, zwana rozetą , jest strategią stosowaną przez pasożyta w celu pozostawania w sekwestracji w mikronaczyniach, aby uniknąć zniszczenia w śledzionie i wątrobie . Rozeta erytrocytów powoduje utrudnienieprzepływu krwi w mikrokapilarach . Istnieje bezpośrednia interakcja między PfEMP1 a funkcjonalnym miejscem receptora dopełniacza typu 1 na niezainfekowanych erytrocytach.
Rola w grupach krwi
Antygen Knops był układ grupy krwi 25-ci rozpoznawane i składa się z pojedynczego antygenu Jork (Yk) A z następujących par alleliczny:
- Knops (Kn) a i b
- McCoy (McC) a i b
- Swain-Langley (Sl) 1 i 2
Wiadomo, że antygen znajduje się w powtórzeniach białka CR1 i został po raz pierwszy opisany w 1970 roku u 37-letniej kobiety rasy kaukaskiej . Różnice rasowe istnieją w częstotliwości występowania tych antygenów: 98,5% i 96,7% Amerykanów rasy białej i Afrykanów ma pozytywny wynik McC(a). 36% populacji Mali było Kn(a), a 14% wykazywało fenotyp zerowy (lub Helgeson) w porównaniu z zaledwie 1% w populacji amerykańskiej. Częstość występowania McC (b) i Sl (2) jest wyższa u Afrykanów w porównaniu z Europejczykami i chociaż częstość występowania McC (b) była podobna u Afrykanów ze Stanów Zjednoczonych lub Mali , fenotyp Sl (b) jest znacznie częstszy u Mali – odpowiednio 39% i 65%. Wydaje się, że w Gambii fenotyp Sl (2)/McC(b) został wyselekcjonowany pozytywnie – prawdopodobnie z powodu malarii. 80% Papui Nowej Gwinei ma fenotyp Helgeson, a badania kliniczno-kontrolne sugerują, że ten fenotyp ma działanie ochronne przed ciężką malarią .
Bibliografia
Dalsza lektura
- Ahearn JM, Fearon DT (1989). „Struktura i funkcja receptorów dopełniacza, CR1 (CD35) i CR2 (CD21)”. Postępy w Immunologii Tom 46 . Przysł. Immunol . Postępy w immunologii. 46 . s. 183-219. doi : 10.1016/S0065-2776(08)60654-9 . Numer ISBN 9780120224463. PMID 2551147 .
- Wong WW, Farrell SA (styczeń 1991). „Proponowana struktura allotypu F' ludzkiego CR1. Utrata miejsca wiązania C3b może być związana ze zmienioną funkcją”. Czasopismo Immunologii . 146 (2): 656–62. PMID 1670949 .
- Tuveson DA, Ahearn JM, Matsumoto AK, Fearon DT (maj 1991). „Interakcje molekularne receptorów dopełniacza na limfocytach B: kompleks CR1/CR2 odmienny od kompleksu CR2/CD19” . Czasopismo Medycyny Eksperymentalnej . 173 (5): 1083-9. doi : 10.1084/jem.173.5.1083 . PMC 2118840 . PMID 1708808 .
- Moulds JM, Nickells MW, Moulds JJ, Brown MC, Atkinson JP (maj 1991). „Receptor C3b/C4b jest rozpoznawany przez antysurowice Knops, McCoy, Swain-langley i York” . Czasopismo Medycyny Eksperymentalnej . 173 (5): 1159–63. doi : 10.1084/jem.173.5.1159 . PMC 2118866 . PMID 1708809 .
- Rao N, Ferguson DJ, Lee SF, Telen MJ (maj 1991). „Identyfikacja ludzkich antygenów grup krwi erytrocytów na receptorze C3b/C4b”. Czasopismo Immunologii . 146 (10): 3502–7. PMID 1827486 .
- Hourcade D, Miesner DR, Bee C, Zeldes W, Atkinson JP (styczeń 1990). „Duplikacja i rozbieżność regionu kodującego na końcu aminowym genu receptora dopełniacza 1 (CR1). Przykład skoordynowanej (poziomej) ewolucji w genie” . Czasopismo Chemii Biologicznej . 265 (2): 974–80. doi : 10.1016/S0021-9258(19)40145-2 . PMID 2295627 .
- Reynes M, Aubert JP, Cohen JH, Audouin J, Tricottet V, Diebold J, Kazatchkine MD (październik 1985). „Ludzkie pęcherzykowe komórki dendrytyczne wyrażają antygeny receptora dopełniacza CR1, CR2 i CR3”. Czasopismo Immunologii . 135 (4): 2687–94. PMID 2411809 .
- Hinglais N, Kazatchkine MD, Mandet C, Appay MD, Bariety J (listopad 1989). „Ludzkie komórki Kupffera wątroby wyrażają antygeny receptora dopełniacza CR1, CR3 i CR4. Badanie immunohistochemiczne”. Badania laboratoryjne; Dziennik Metod Technicznych i Patologii . 61 (5): 509–14. PMID 2478758 .
- Fearon DT, Klickstein LB, Wong WW, Wilson JG, Moore FD, Weis JJ i in. (1989). „Funkcje immunoregulacyjne dopełniacza: badania strukturalne i funkcjonalne receptora dopełniacza typu 1 (CR1; CD35) i typu 2 (CR2; CD21)”. Postęp w badaniach klinicznych i biologicznych . 297 : 211-20. PMID 2531419 .
- Wong WW, Cahill JM, Rosen MD, Kennedy CA, Bonaccio ET, Morris MJ i in. (marzec 1989). „Struktura ludzkiego genu CR1. Molekularne podstawy polimorfizmów strukturalnych i ilościowych oraz identyfikacja nowego allelu podobnego do CR1” . Czasopismo Medycyny Eksperymentalnej . 169 (3): 847–63. doi : 10.1084/jem.169.3.847 . PMC 2189269 . PMID 2564414 .
- Wong WW, Kennedy CA, Bonaccio ET, Wilson JG, Klickstein LB, Weis JH, Fearon DT (listopad 1986). „Analiza wielu polimorfizmów długości fragmentów restrykcyjnych genu dla ludzkiego receptora dopełniacza typu I. Duplikacja sekwencji genomowych zachodzi w połączeniu z allotypem receptora o wysokiej masie cząsteczkowej” . Czasopismo Medycyny Eksperymentalnej . 164 (5): 1531–46. doi : 10.1084/jem.164.5.1531 . PMC 2188435 . PMID 2877046 .
- Wong WW, Klickstein LB, Smith JA, Weis JH, Fearon DT (listopad 1985). „Identyfikacja częściowego klonu cDNA dla ludzkiego receptora dla fragmentów dopełniacza C3b/C4b” . Materiały Narodowej Akademii Nauk Stanów Zjednoczonych Ameryki . 82 (22): 7711-5. Kod Bibcode : 1985PNAS...82.7711W . doi : 10.1073/pnas.82.22.7711 . PMC 391403 . PMID 2933745 .
- Klickstein LB, Wong WW, Smith JA, Weis JH, Wilson JG, Fearon DT (kwiecień 1987). „Ludzki receptor C3b/C4b (CR1). Wykazanie długich homologicznych powtarzających się domen, które składają się z krótkich konsensusowych powtórzeń charakterystycznych dla białek wiążących C3/C4” . Czasopismo Medycyny Eksperymentalnej . 165 (4): 1095–112. doi : 10.1084/jem.165.4.1095 . PMC 2188588 . PMID 2951479 .
- Moldenhauer F, David J, Fielder AH, Lachmann PJ, Walport MJ (wrzesień 1987). „Odziedziczony niedobór receptora dopełniacza erytrocytów typu 1 nie powoduje podatności na toczeń rumieniowaty układowy” . Artretyzm i reumatyzm . 30 (9): 961–6. doi : 10.1002/art.1780300901 . PMID 2959289 .
- Hourcade D, Miesner DR, Atkinson JP, Holers VM (październik 1988). „Identyfikacja alternatywnego miejsca poliadenylacji w jednostce transkrypcyjnej ludzkiego receptora C3b/C4b (receptor dopełniacza typu 1) i przewidywanie wydzielanej postaci receptora dopełniacza typu 1” . Czasopismo Medycyny Eksperymentalnej . 168 (4): 1255–70. doi : 10.1084/jem.168.4.1255 . PMC 2189081 . PMID 2971757 .
- Klickstein LB, Bartow TJ, Miletic V, Rabson LD, Smith JA, Fearon DT (listopad 1988). „Identyfikacja różnych miejsc rozpoznawania C3b i C4b w ludzkim receptorze C3b/C4b (CR1, CD35) przez mutagenezę delecyjną” . Czasopismo Medycyny Eksperymentalnej . 168 (5): 1699-717. doi : 10.1084/jem.168.5.1699 . PMC 2189104 . PMID 2972794 .
- Hing S, Day AJ, Linton SJ, Ripoche J, Sim RB, Reid KB, Solomon E (maj 1988). „Przypisanie składników dopełniacza białka wiążącego C4 (C4BP) i czynnika H (FH) do ludzkiego chromosomu 1q, przy użyciu sond cDNA”. Roczniki Genetyki Człowieka . 52 (2): 117–22. doi : 10.1111/j.1469-1809.1988.tb01086.x . PMID 2977721 . S2CID 37855701 .
- Fearon DT (lipiec 1985). „Ludzkie receptory dopełniacza dla C3b (CR1) i C3d (CR2)” . Czasopismo Dermatologii Śledczej . 85 (1 dodatek): 53s-57s. doi : 10.1111/1523-1747.ep12275473 . PMID 2989379 .
- Wilson JG, Murphy EE, Wong WW, Klickstein LB, Weis JH, Fearon DT (lipiec 1986). „Identyfikacja polimorfizmu długości fragmentów restrykcyjnych przez cDNA CR1, który koreluje z liczbą CR1 na erytrocytach” . Czasopismo Medycyny Eksperymentalnej . 164 (1): 50–9. doi : 10.1084/jem.164.1.50 . PMC 2188187 . PMID 3014040 .
Zewnętrzne linki
- CR1+białko,+człowiek w Narodowej Bibliotece Medycznej USA Medical Subject Headings (MeSH)
- Receptory, + Uzupełnienie + 3b w Narodowej Bibliotece Medycznej USA Medical Subject Headings (MeSH)
- System grup krwi Knopsa w BGMUT Blood Group Antigen Gene Mutation Database w NCBI , NIH
Ten artykuł zawiera tekst z Narodowej Biblioteki Medycznej Stanów Zjednoczonych , która jest własnością publiczną .